Guide complet du ver blanc de la canne à sucre : lutte biologique et meilleurs insecticides

Une attaque terrifiante de ravageurs et d’infections qui dévastent la culture de la canne à sucre décime chaque année 15 à 30 % de la production mondiale. Les foreurs des tiges, responsables de la verse, de la perte de rendement et d’une mauvaise transformation au Mexique, comprennent les foreurs précoces des pousses, les foreurs des sommités, les foreurs des racines, les cicadelles de la canne à sucre, les foreurs de la tige et les foreurs du riz mexicain. Parallèlement, la photosynthèse des plantes est compromise par des ravageurs à corps mou tels que les aleurodes, les cochenilles farineuses, les pucerons lanigères, les acariens et les cochenilles, tandis que les larves du sol, les vers fil-de-fer et les vers gris détruisent les jeunes plants au niveau de la rhizosphère ; des champignons comme la pourriture rouge, la carie, le flétrissement, le pokkah boeng et la pourriture du sette affaiblissent la qualité du jus et sa capacité de conservation, et le flétrissement bactérien entraîne un effondrement rapide des structures vasculaires. L’approche de gestion traditionnelle, fortement dépendante des produits chimiques, favorise l’apparition de résistances et nuit à la vie des organismes bénéfiques, tout en compromettant la viabilité à long terme. La production biologique de canne à sucre exige des traitements biologiques combinés : Bacillus thuringiensis (BT Thuricide) contre les foreurs lépidoptères, sans risque de résistance ; Beauveria bassiana, bioinsecticide fongique (Beveria WP), contre une large gamme de ravageurs à corps mou, également sans risque de résistance ; Metarhizium anisopliae sous forme de granulés (Met Zone) appliqués au sol pour contrôler les larves du sol de la canne à sucre tout au long de l’année ; Trichoderma harzianum (Trianum Shield). Ce modèle biologique global — mélange de champignons entomopathogènes, de micro-organismes antagonistes et de bactéries favorisant la croissance des plantes — permet de se passer des produits chimiques, d’assurer un contrôle biologique fiable et durable des larves du sol tout au long de la saison, sans période d’interdiction de récolte, tout en obtenant la certification biologique et en garantissant la rentabilité et la durabilité. Dans les prochaines sections, nous aborderons le cycle de vie de la larve du sol de la canne à sucre, son nom scientifique, les infestations de larves du sol dans la canne à sucre, ainsi que bien d’autres aspects.

Biologie et cycle de vie du scarabée blanc de la canne à sucre : base pour une stratégie de gestion

La maîtrise des larves blanches dans la canne à sucre repose sur des bases biologiques qui sous-tendent toutes les décisions de lutte. Les coléoptères adultes éclosent durant la saison des moussons (de mai à juillet, en Inde), et leur émergence est maximale lorsque l’humidité du sol, nécessaire aux insectes pondant, atteint un cumul de précipitations de 40 mm. Les femelles déposent 100 à 150 œufs en petits amas dans le sol, à une profondeur comprise entre 10 et 15 cm, mais elles privilégient les sols meubles, riches en matière organique, qui facilitent le déplacement et l’alimentation des larves. Les œufs éclosent généralement en 8 à 12 jours ; au moment de l’éclosion, les nouvelles larves de premier stade (2 à 3 mm) se mettent à se nourrir des fines poils racinaires de la canne à sucre – un dommage causé par les larves blanches qui n’a pas d’impact économique direct, mais qui constitue la base de la population future au cours des mois suivants.

Le développement de la larve se déroule en trois stades larvaires bien distincts sur une période de 12 à 18 mois : le premier stade (2 à 3 mm, 4 à 6 semaines) vit presque exclusivement sur les poils absorbants des racines et sur la matière organique du sol, mais cause peu de dommages par rapport à la tolérance de la plante. Le deuxième stade (10 à 15 mm, 3 à 4 mois) se caractérise par une alimentation latérale aux racines ; la destruction qu’il engendre est 5 à 10 fois supérieure à celle du premier stade. Le troisième stade, qui représente le stade le plus avancé (taille finale de 35 à 40 mm, durée de 6 à 8 mois), provoque des dégâts catastrophiques : il dévore entièrement les systèmes racinaires, entraînant la mort des plantes et une perte de 90 % du rendement économique. Ce dernier stade de croissance coïncide avec les phases critiques de la culture (tallage, période de croissance intense), au cours desquelles la demande en ressources atteint son maximum.

Les mois d’hiver (décembre-février, en Inde) sont consacrés à la pupaison, processus qui dure 2 à 3 semaines, au cours duquel les larves blanches de vers blancs se transforment en stade pupal, très sensible à toute perturbation mécanique affectant la larve ainsi qu’aux conditions anaérobies du sol. Cette période de vulnérabilité hivernale constitue une opportunité de lutte qu’il convient de prendre très au sérieux : lorsque les champs sont inondés durant la pupaison (ce qui crée des conditions anoxiques et réduit la survie des pupes de 40 à 60 %) ; ou lorsque les pupes sont exposées à un labour profond (25 à 30 cm), ce qui les expose aux prédateurs coléoptères et aux micro-organismes, pendant la même période.

Le premier principe de gestion d’une telle situation devient évident : les interventions en début de saison, au stade du premier ou du deuxième stade larvaire, sont moins coûteuses que les traitements effectués en fin de saison, dont le coût augmente de manière exponentielle lorsque les larves du troisième stade prédominent. Un producteur qui détecte 5 larves par plant en octobre subira une perte proche de 100 % ; en revanche, un nombre comparable en juin permettra d’intervenir avant que la perte cumulative due à une forte population ne se fasse sentir. Continuez votre lecture pour en savoir plus sur le meilleur insecticide contre les vers blancs. 
 

Identification des dégâts causés par les larves blanches et seuils économiques

Les symptômes des dégâts causés par les vers blancs sont subtils lorsqu’il s’agit de leur contrôle, car ils provoquent un flétrissement même lorsque le sol est suffisamment humide (les larves se nourrissant de l’eau contenue dans les racines). Le feuillage jaunit progressivement, la croissance reste généralement insuffisante malgré une bonne compétitivité de la plante, et les systèmes racinaires présentent souvent un dessèchement ainsi qu’une structure racinaire creuse, avec des trous rongés par les larves. Les motifs en taches observés dans les parcelles groupées indiquent des zones d’anciennes pontes : lorsque le producteur constate 2 à 4 rangées consécutives de culture présentant une détérioration uniforme, il peut supposer que cette zone abrite des vers blancs plutôt qu’une maladie ou un problème nutritionnel.

Des décennies de recherche ont abouti à des recommandations concernant les seuils économiques, selon lesquelles 2 à 4 larves par plante constituent le seuil déclenchant l’intervention. Dans les populations de faible densité, la suppression des ennemis naturels et la tolérance des plantes empêchent généralement toute perte de rendement économiquement significative; en revanche, lorsque la densité dépasse un certain seuil, une intervention chimique ou biologique intensive devient économiquement rentable. La méthodologie utilisée pour le suivi sur le terrain est primordiale : des carottes de sol d’une profondeur de 10 à 15 cm prélevées à plusieurs sites expérimentaux durant les mois de la mousson et de la post-mousson (juin à octobre) fournissent des données fiables sur la densité de population. Le suivi hivernal, quant à lui, n’est pas précis, car les larves se déplacent à des profondeurs comprises entre 30 et 40 cm, ce qui leur permet d’échapper aux prélèvements classiques et entraîne des résultats faussement négatifs.

C’est précisément en raison de seuils économiques bien définis que l’on parvient à éviter les dommages aux racines de la canne à sucre. Un producteur qui traite 50 hectares à raison de 100 litres par hectare, pour un coût de 5 000 euros consacré à des produits phytosanitaires préventifs, et dont la densité moyenne dans le champ est de 0,5 larve par plant, n’obtiendra pas de retour sur investissement. En revanche, si l’intervention est reportée jusqu’en octobre, lorsque les larves présentes dans le champ sont au stade de troisième instar, le rendement sera alors réduit de 20 à 30 %, ce qui rendra le traitement curatif peu efficace.

Contrôle culturel des pratiques de lutte contre les larves blanches : fondement d’une gestion durable

La lutte culturelle contre le ver blanc de la canne à sucre met l’accent sur des pratiques peu coûteuses et fondées sur l’expérience, visant à réduire les populations de ravageurs par des méthodes à faible coût mises en œuvre par les agriculteurs, sans recourir à des produits chimiques. Voici les mesures préventives :

Assainissement des champs : L’élimination des résidus de culture immédiatement après la récolte prive le scarabée blanc de la canne à sucre des lieux de refuge et des terriers. Labourage en profondeur (25–30 cm) : Le labourage en profondeur est pratiqué afin de perturber le stade de nymphose (novembre–janvier) : ce travail du sol expose 40 à 60 % des nymphes aux effets des coléoptères prédateurs, des guêpes parasitoïdes et des micro-organismes. Stratégie d’inondation : Une immersion du sol pendant 2 à 3 semaines au pic de nymphose (janvier–février), dans le cadre d’irrigations à grande échelle, crée des conditions anaérobies du sol qui sont mortelles pour les nymphes ; selon les données de recherche, cela entraîne une réduction de 40 à 60 % de la population de nymphes. Contrôle de la mouche blanche par l’humidité : La capacité de rétention en eau du sol (40 à 60 %) maintenue durant la saison des pluies permet de maintenir la population de larves dans le sol à un niveau minimal.

Rotation des cultures : alternance de la canne à sucre avec des cultures non-hôtes (légumineuses, légumes, céréales) pendant 1 à 2 saisons, afin de rompre le cycle de vie des coléoptères adultes. Variétés résistantes : certaines variétés de canne à sucre présentent une résistance génétique. Des cultivars tels que Co 86032 et Up 4271 subissent moins de dégâts racinaires que les cultivars sensibles, avec une réduction de 30 à 40 % des dommages aux racines. Manipulation de la date de plantation : l’implantation des cultures (en mai–juin) doit être effectuée de manière précoce (avant que la culture établie n’atteigne son pic d’émergence des coléoptères adultes), afin de favoriser le développement de systèmes racinaires robustes capables de résister aux forages des larves lors de leur alimentation ultérieure.

L’ensemble de ces mesures permet d’économiser 20 à 30 % du rendement (soit l’équivalent de 17,5 dollars pour 50 cents par dollar) en protections (financières) – avec un retour sur investissement de 4:1 – et contribue à rendre les sols plus sains à long terme.

Lutte biologique : exploiter les ennemis naturels

La lutte biologique contre le ver blanc dans la canne à sucre met à profit les parasitoïdes, prédateurs et entomopathogènes naturellement présents. Guêpes parasitoïdes : Selon les guêpes scoliides (espèces des genres Campsomeris et Scolia), les larves du troisième stade sont repérées grâce aux vibrations de la surface du sol et aux signaux chimiques. Les guêpes y injectent leurs œufs dans le corps des vers blancs ; les larves éclosent à l’intérieur de l’hôte et s’en nourrissent pendant 7 à 10 jours. Les populations de vers parasitoïdes se multiplient naturellement dans les champs enrichis en matière organique et abritant des haies et des plantes à fleurs. Dans les exploitations où une communauté de parasitoïdes est bien établie, on rapporte que les cultures subissent un taux de parasitisme de 40 à 50 %.

Champignons entomopathogènes : Metarhizium anisopliae (formulation commerciale Insecticide Met Zone ) est l’organisme qui constitue une faune persistante dans le sol et infecte de manière proactive les larves de hannetons au contact direct avec la cuticule. Les spores germent sur la cuticule des larves, pénètrent dans leurs tissus internes, les infectent et entraînent leur mort en 7 à 14 jours. Il est essentiel d’effectuer les applications au moment le plus opportun, pendant la période d’éclosion des œufs (juin-juillet), lorsque les larves du premier stade éclosent.

Coléoptères carabes prédateurs : les œufs et les larves au stade initial des vers blancs sont également consommés par les coléoptères carabes (espèces d’Anthia et d’Ophionella) ; leurs populations s’élèvent lorsque le sol n’est pas perturbé et est maintenu avec une alimentation organique. Des parcelles comptant plus de 50 coléoptères carabes pour 100 m² assurent un contrôle quantifiable des ravageurs.

Conservation des ennemis naturels : La base de la lutte biologique contre les larves blanches consiste à limiter l’utilisation des pesticides à large spectre. Les interventions phytosanitaires (n’appliquées sur des zones spécifiques que lorsque les seuils économiques sont dépassés) peuvent être alternées avec des méthodes biologiques ou culturales, ce qui permet une régénération des populations d’ennemis naturels entre deux traitements.

Lutte chimique et gestion intégrée

L’insecticide de lutte contre les vers blancs varie selon la localité et la densité de la population de ravageurs. Les néonicotinoïdes (imidaclopride, thiaméthoxame) : effet systémique assurant un contrôle résiduel à long terme de 3 à 4 mois ; ils agissent également sur les larves des premier et deuxième stades. Les organophosphorés (chlorpyrifos, phorate) : action de contact à large spectre ; les larves mobiles du premier stade sont rapidement abattues. Les carbamates (carbofurane) : l’effet d’abattement est rapide, mais leur phytotoxicité est trop élevée, ce qui exige une application soigneusement synchronisée. Les pyréthroïdes (cyperméthrine, bifenthrine) : leur efficacité est limitée face aux vers blancs résistants présents dans le sol.

Moment d’application : juin–juillet ; l’arrivée de la mousson et le pic d’éclosion des œufs constituent le meilleur moment pour l’application. Il est recommandé d’effectuer le traitement des sols en amont, avant l’arrivée de la mousson, 2 à 3 semaines à l’avance, afin de permettre une période de 2 à 3 semaines pendant laquelle les produits chimiques se diffusent dans le profil du sol. Les applications en fin de saison (août–septembre) ciblent les larves au stade II ; toutefois, ces applications présentent un intérêt économique marginal.

Gestion de la résistance dans le cadre du traitement contre les larves blanches : une rotation des produits chimiques est nécessaire pour prévenir l’accumulation d’allèles de résistance.

Année 1 : rotation des néonicotinoïdes, Année 2 : rotation des organophosphorés, Année 3 : rotation des carbamates.

La table ne parvient pas à induire une pression de sélection monoclasse. Le passage alterné entre les interventions chimiques et biologiques minimise également la sélection de résistances, mais n’entraîne pas de réduction des stocks d’ennemis naturels. Dans la section suivante, nous aborderons le meilleur insecticide contre les vers blancs.

Stratégie intégrée à long terme pour le scarabée blanc de la canne à sucre

Comment contrôler les larves blanches dans la canne à sucre ? Labourage en profondeur avant la mousson : de novembre à janvier, un labour de 15 à 20 cm expose 40 à 60 % des pupes aux prédateurs et élimine les chaumes, ce qui empêche le développement des adultes.

Surveillance hebdomadaire des vols de papillons : les tendances de la population sont déterminées par la désactivation des pièges à phéromones, lorsque le seuil de 5 à 10 coléoptères par piège est atteint ; dès que ce seuil est franchi, une intervention est mise en œuvre afin d’éviter une perte de rendement de l’ordre de 1 000 à 2 000 euros par hectare.

Metarhizium anisopliae (meilleur insecticide contre les vers blancs) + Rotation des produits chimiques : Des populations persistantes de granules fongiques, qui entraînent la mort des larves 7 à 14 jours après l’infection, se développent avec Met Zone. Une suppression constante grâce à une rotation mensuelle des produits chimiques permet d’éviter le développement de la résistance.

Intégration de l’outil post-récolte + Lutte intégrée contre les ravageurs : labour post-récolte visant à interrompre le cycle de vie : larves perturbées : post-récolte ; rotation des cultures : interruption du cycle de vie ; alternance entre culture et lutte biologique (année 1) : adaptation des ravageurs évitée (année 2) : rapport I‑Valeur de 4:1. Effectuer un prélèvement de 10 à 15 carottes de sol tous les deux semaines de mai à octobre ; traiter non seulement lorsque les seuils ont été atteints, mais également lorsqu’une application généralisée a été réalisée.

La lutte biologique contre les vers blancs est efficace lorsqu’elle s’appuie sur un système intégré reposant sur des interventions précoces fondées sur des principes biologiques, sur la valorisation des auxiliaires de lutte biologique et sur une utilisation stratégique des produits phytosanitaires. En mettant l’accent sur une compréhension biologique de l’agriculture, sur le calendrier des interventions saisonnières et sur une prise de décision fondée sur la surveillance, les agriculteurs décentralisés parviennent à assurer une gestion équilibrée des ravageurs au fil des saisons, à renforcer durablement la santé des sols et à prévenir l’apparition de résistances — ce qui se traduit, à terme, par une production pérenne et rentable sur le long terme.

Référence :

• Ramanujam, B., et al. « Lutte biologique contre les vers blancs, Holotrichia serrata (Fabricius) dans la canne à sucre, par deux espèces de champignons entomopathogènes, Metarhizium anisopliae et Beauveria bassiana. » Journal international des sciences des insectes tropicaux 41.1 (2021) : 671-680.
• Samson, P. R., T. N. Staier et J. I. Bull. « Évaluation d’une procédure d’application de METARHIZIUM ANISOPLIAE sur les repousses de canne à sucre pour lutter contre le scarabée blanc Dermolepida albohirtum. » Protection des cultures 25.8 (2006) : 741-747.